培養(yǎng)基pH值變化迅速

1.培養(yǎng)箱CO2分壓設(shè)置錯(cuò)誤  根據(jù)培養(yǎng)基中NaHCO3的濃度增大或降低培養(yǎng)箱CO2的分壓，NaHCO3濃度為2.0-3.7g/L時(shí)，應(yīng)相應(yīng)地使用5%-10%的CO2分壓

2.細(xì)胞培養(yǎng)瓶瓶蓋過(guò)緊  將瓶蓋旋松1/4圈

3.碳酸氫鹽緩存系統(tǒng)緩沖能力不足   加入HEPES緩沖液，使其終濃度為10-25mM

4.培養(yǎng)基中鹽含量不正確  CO2平衡環(huán)境中使用以Earle平衡鹽為基礎(chǔ)的培養(yǎng)基，大氣條件下使用以Hanks平衡鹽為基礎(chǔ)的培養(yǎng)基

5.細(xì)菌、酵母或真菌污染   將細(xì)胞和培養(yǎng)基滅菌處理后丟棄

 

細(xì)胞無(wú)法在培養(yǎng)器皿上貼壁生長(zhǎng)

 

1.細(xì)胞消化過(guò)度  縮短消化時(shí)間或減少用量

2.支原體污染  隔離細(xì)胞，檢測(cè)是否感染支原體；清洗通風(fēng)廚和培養(yǎng)箱，如細(xì)胞被污染，滅菌處理后丟棄

3.培養(yǎng)基中無(wú)附著因子  如果使用的是無(wú)血清配方，應(yīng)確保含有附著因子或者使用經(jīng)過(guò)包被的培養(yǎng)板

 

懸浮細(xì)胞聚集成團(tuán)

 

1.存在鈣離子和鎂離子  用不含鈣離子和鎂離子的平衡鹽溶液清洗細(xì)胞，輕輕吹打細(xì)胞，使其形成單細(xì)胞懸液

2.支原體污染  隔離細(xì)胞，檢測(cè)是否感染支原體；清洗通風(fēng)廚和培養(yǎng)箱，如細(xì)胞被污染，滅菌處理后丟棄

3.蛋白水解酶消化過(guò)度導(dǎo)致細(xì)胞裂解、DNA釋放  用0.001%DNA酶I處理細(xì)胞；用PBS沖洗后再接種到新培養(yǎng)基中

 

細(xì)胞生長(zhǎng)緩慢

 

1.培養(yǎng)基或血清改變  比較不同培養(yǎng)基配方中葡萄糖、氨基酸及其他成分有無(wú)差異；通過(guò)生長(zhǎng)實(shí)驗(yàn)比較新老批次血清有無(wú)差異；增大細(xì)胞初始接種密度；使細(xì)胞逐步適應(yīng)新的培養(yǎng)基

2.必需生長(zhǎng)促進(jìn)成分（如L-或生長(zhǎng)因子）耗竭、缺乏或分解  去除原培養(yǎng)基，加入新鮮培養(yǎng)基；向培養(yǎng)基中添加生長(zhǎng)促進(jìn)成分（如L-）

3.輕度細(xì)菌或真菌污染  在不添加抗生素的條件下進(jìn)行培養(yǎng)，如細(xì)胞被污染，滅菌處理后丟棄

4.時(shí)間存儲(chǔ)不當(dāng)  血清應(yīng)于-5℃至-20℃下儲(chǔ)存；培養(yǎng)基應(yīng)于2℃~8℃下避光儲(chǔ)存；盡量減少血清和培養(yǎng)基見(jiàn)光時(shí)間

5.細(xì)胞初始接種密度低  增大活細(xì)胞接種密度

6.細(xì)胞衰老、老化  將老化細(xì)胞丟棄，取用代數(shù)較少的細(xì)胞

7.支原體污染  隔離細(xì)胞，檢測(cè)是否感染支原體；清洗通風(fēng)廚和培養(yǎng)箱，如細(xì)胞被污染，滅菌處理后丟棄

 

細(xì)胞死亡

 

1.培養(yǎng)箱中無(wú)CO2  監(jiān)測(cè)培養(yǎng)箱中CO2使用速度以便確定及時(shí)更換氣瓶；經(jīng)常檢測(cè)管路連接處是否漏氣；不要頻繁開(kāi)啟培養(yǎng)箱門

2.培養(yǎng)箱內(nèi)溫度有波動(dòng)  監(jiān)測(cè)培養(yǎng)箱內(nèi)溫度，及時(shí)校正

3.使用抗生素達(dá)到毒性濃度  減少抗生素的用量；使用無(wú)血清培養(yǎng)基時(shí)，抗生素濃度應(yīng)降低至1/10

4.細(xì)胞復(fù)蘇或凍存時(shí)受到損傷  取用新的細(xì)胞

5.培養(yǎng)基的滲透壓不合適  檢查*培養(yǎng)基的滲透壓。大多數(shù)哺乳動(dòng)物細(xì)胞可耐受260~350mOsm/kg的滲透壓，加入某些試劑和藥物后會(huì)影響培養(yǎng)基的滲透壓；昆蟲細(xì)胞培養(yǎng)基的滲透壓（340~380mOsm/kg）要高于哺乳動(dòng)物細(xì)胞

6.培養(yǎng)基中毒性代謝產(chǎn)物蓄積  去除原培養(yǎng)基，換用新鮮培養(yǎng)基

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